Mikroskopieren

 

 

Das Mikroskop ist zur Bestimmung von vielen Pilzgruppen unentbehrlich. Deshalb führen wir im Winterhalbjahr Mikroskopierabende im Naturmuseum Luzern durch. Diese dienen der Weiterbildung unserer Mitglieder. Auch Anfänger sind stets willkommen. Die Mykologische Gesellschaft besitzt selbst einige Mikroskope.

 Gebrauch von Reagenzien                Russula Sporen und Huthaut
                                                                    Tips fürs Mikroskop

Mikroskopierabende   2010

Am 1. März erfolgt statt mikroskopieren die makroskopische Bestimmung von Bäumen und Sträuchern nach Holz, Rinde und Knospen mit Lupe oder Stereolupe.
Rolf Mürner wird die Merkmale zeigen um die wichtigsten Bäume und Sträucher auch ohne Blätter sicher zu bestimmen.

An den übrigen Abenden behandeln Mitglieder der TK Schlauch-, Rinden-, und Blätterpilze die zum jeweiligen Zeitpunkt vorhanden sind.
Zum Bestimmen BK Band 1 und 2 mitnehmen. Auch Anfänger sind willkommen.

Die Mikroskopierabende finden im Naturmuseum Luzern statt.

Die Daten

Montag, 11 Januar 2010 20.00 Mikroskopieren, Funde vom 9. Januar Naturmuseum
Montag, 1. Februar 2010 20.00 Mikroskopieren und Bestimmen
Aphyllophorales, BK 2 mitnehmen
Kilian Mühlebach		 Naturmuseum
Montag, 1. März 2010 20.00 Bäume und Sträucher im Winter
Bestimmen anhand von Knospen und Zweigen  Rolf Mürner		 Naturmuseum
Montag, 12. April 2010 20.00 Mikroskopieren und Bestimmen
BK 1 und 2 mitnehmen  Fritz Müller		 Naturmuseum
Montag, 17. Mai 2010 20.00 Mikroskopieren, Funde vom 15. Mai Naturmuseum
Montag, 7. Juni 2010 20.00 Mikroskopieren, Funde vom 5. Juni Naturmuseum
Montag, 15. November 20.00 Mikroskopieren und Bestimmen
Funde vom 13. November		 Naturmuseum
Montag, 13. Dezember 20.00 Mikroskopieren und Bestimmen Naturmuseum

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Zusammengestellt von Josef Breitenbach †

Reagenzien für makroskopische Reaktionen

Reagenzien-Name

Makroskopische Anwendung
1. Kalilauge 10% KOH auf Hut oder Fleisch - Reaktion gelb, braun, schwarz oder null
2. Eisensulfat FSO4 auf Fleisch oder Lamellen = rot oder blau
3.Guaiak - Tinktur auf Fleisch = blau (negativ), rot (positiv)
4. Salpetersäure HNO3 für die Schaeffer - Reaktion zusammen mit Anilin
5. Anilin für die Schaeffer - Reaktion zusammen mit Salpetersäure
6. Ammoniak NH4OH oder NH3 Farbreaktion auf Hut oder Fleisch, meist genügt auch nur der Dampf aus dem Fläschchen. (wirkt ähnlich wie KOH
7. Phenol (wasser) Farbreaktion auf Hut oder Fleisch
8. Lugol Farbreaktion auf Hut oder Fleisch
9. Formol Farbreaktion auf Hut oder Fleisch
10. Schwefelsäure H2SO4 Farbreaktion auf Hut oder Fleisch

 

Uebersichtstabelle der meistgebrauchten Makroreagenzien für welche Pilzgruppe

Reagens / Pilzgruppe Agari-
cus		 Ama-
nita		 Bole-
tus		 Clito-
cybe &
Clito-
pilus		 Corti-
narius		 Ento-
loma		 Gom-
phidius		 Lepi-
sta		 Hygro-
phorus		 Lacta-
rius		 Lepio-
ta		 Tricho-
loma		 Rus-
sula		 Clava-
ria		 Poly-
pora-
les
1.Kalilauge  

+

 +   +   +   + +     +    
2.Eisenslfat   +               +   + + +  
3.Guaiak-Tinktur       + + +   +     +   + +  
4.Salpetersäure + +                   +      
5.Anilin +                         +  
6.Ammoniak     +   +   +   + + +   +   +
7.Phenol   +                     +    
8.Lugol         +                    
9.Formol     +                     +  
10.Schwefelsäure   +   + +                    
Die Pilzgruppen dieser Liste verstehen sich im weiteren Sinne. Die einzelnen Farbreaktionen sind  den Bestimmungsschlüsseln oder Pilzbeschreibungen zu entnehmen.

 

Reagenzien für mikroskopische Untersuchungen

Reagenzien - Name Mikroskopische Anwendung
Ammoniak schwaches Quellmittel für Exsikkate
Nachweis von Kristallnadeln bei Conocybe
Baumwollblau -  Lactophenol Sporenornamentation bei Ascomycetensporen
Nachweis von Cyanophilie
Lugol Nachweis von Amyloidität bei Sporen und Asci, graublau = +
Nachweis von Dextrinoidität, weinrot = +
Chloralhydrat in Mischung mit Lugol zum Nachweis von Amyloidität und Dextrinoidität
als Untersuchungsmedium nach Färbung und zur Aufhellung von Präparaten
Karminessigsäure Färbemittel für den Nachweis der siderophilen Granulation in Basidien,
zur Zellkernfärbung
Eisenchlorid Beizmittel für den Nachweis der siderophilen Granulation
Kalilauge 3% Quellmittel für Exsikkat - Fragmente, aber auch als allgemeines Untersuchungsmedium. Günstig auch als Vorbehandlung bei Amyloiditäts Tests
Nachweis von Chrysozystiden
Kongorot - Ammoniak
Kongorot - Wasser		 allgemeines Untersuchungsmedium und Färbemittel
färbt die Zellwände an
Karbolfuchsin zur Färbung und Sichtbarmachung der Inkrustation der Primordialhyphen bei Russulaarten
L4 allgemeines Untersuchungsmedium und schwaches Quellmittel
Sulfovanillin
Sulfobenzaldehyd		 zur Darstellung von Gloeozystiden bei Corticiaceae und Russula
Kresylblau Nachweis der Metachromasie an Sporen
Patentblau Darstellung der Chrysozystiden
Trypanblau färbt wie Kongorot die Zellwände an
Quellmittel Quellmittel für Exsikkat - Material vor der mikroskopischen Untersuchung, nicht als Untersuchungsmedium geeignet

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